芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞增殖的影响

doi:10.3969/j.issn.2095-4344.2012.49.023

中国组织工程研究 ›› 2012, Vol. 16 ›› Issue (49): 9247-9252.doi: 10.3969/j.issn.2095-4344.2012.49.023

• 干细胞与中医药 stem cells and traditional Chinese medicine • 上一篇下一篇

芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞增殖的影响

李晓峰，赵劲民，罗世兴，程建文，刘军廷

广西医科大学第一附属医院创伤骨科手外科，广西壮族自治区南宁市 530021

收稿日期:2012-02-27 修回日期:2012-05-25 出版日期:2012-12-02 发布日期:2012-12-02
通讯作者: 赵劲民，博士，教授，广西医科大学第一附属医院创伤骨科手外科，广西壮族自治区南宁市 530021 zhaojinmin@126.com
作者简介:李晓峰☆，男，1974年生，吉林省德惠县人，汉族，2011年广西医科大学毕业，博士，主治医师，主要从事创伤外科手外科、组织工程方面的研究。xiaofengli74@163.com
基金资助:
广西卫生厅中医药科技专项(GZKZ 10-011)；广西科技厅人口健康与食品安全关键技术研究开发项目(1140003A-31)；广西教育厅桂教(201010 LX050)；广西研究生教育创新计划项目(20101059810 02D26)。

Effect of mangiferin on the proliferation of rat bone marrow mesenchymal stem cells

Li Xiao-feng, Zhao Jin-min, Luo Shi-xing, Cheng Jian-wen, Liu Jun-ting

Department of Traumatic Orthopedics and Hand Surgery, the First Affiliated Hospital of Guangxi Medical University, Nanning 530021, Guangxi Zhuang Autonomous Region, China

Received:2012-02-27 Revised:2012-05-25 Online:2012-12-02 Published:2012-12-02
Contact: Zhao Jin-min, Doctor, Professor, Department of Traumatic Orthopedics and Hand Surgery, the First Affiliated Hospital of Guangxi Medical University, Nanning 530021, Guangxi Zhuang Autonomous Region, China zhaojinmin@126.com
About author:Li Xiao-feng☆, Doctor, Attending physician, Department of Traumatic Orthopedics and Hand Surgery, the First Affiliated Hospital of Guangxi Medical University, Nanning 530021, Guangxi Zhuang Autonomous Region, China xiaofengli74@163.com
Supported by:
Traditional Chinese Medicine Science and Technology Projects of Guangxi Health Department, No. GZKZ 10-011*; Population Health and Food Safety Key Technology Research and Development Projects of Guangxi Science and Technology Department, No. 1140003A-31*; Guangxi Education Department, No. 201010LX050*; Guangxi Graduate Education Innovation Projects, No. 2010105981002D26*

摘要/Abstract

摘要：

背景：组织工程需要大量的种子细胞，尚未见芒果苷促进骨髓间充质干细胞增殖的报道。
目的：观察芒果苷对体外培养大鼠骨髓间充质干细胞增殖作用。
方法：通过全骨髓贴壁法体外分离、培养、纯化大鼠骨髓间充质干细胞。应用MTT法检测芒果苷细胞毒性并绘制生长曲线，细胞周期检测及细胞增殖示踪检测，观察不同浓度的芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞毒性及生物学性状影响，不同浓度的芒果苷对体外培养骨髓间充质干细胞增殖的影响。
结果与结论：在一定浓度范围内，不同浓度的芒果苷均可促进大鼠骨髓间充质干细胞增殖、分化，并呈现出一定的量效、时效关系。药物作用时间48，72 h，芒果苷20 μmol/L、40 μmol/L组作用最为显著(P < 0.01)；80 μmol/L组次之(P < 0.05)。芒果苷浓度20，40，80 μmol/L等各组细胞S期比值均较正常细胞显著增高，以芒果苷40 μmol/L组最显著(P < 0.05)。提示芒果苷具有促进体外大鼠骨髓间充质干细胞细胞增殖的作用。

关键词: 芒果苷, 骨髓间充质干细胞, 细胞增殖, 组织工程, 细胞周期

Abstract:

BACKGROUND: Tissue engineering requires a lot of seed cells, and the reports on mangiferin promotion of bone mesenchymal stem cells proliferation are rare.
OBJECTIVE: To observe the effects of mangiferin on the proliferation of rat bone marrow mesenchymal stem cells in vitro.
METHODS: Bone marrow mesenchymal stem cells from rats were isolated, cultured and purified by the whole bone marrow adherence method. The MTT method was used to detect the cytotoxicity of mangiferin and the growth curve was drawn, and the cell cycle detection and the cell proliferation tracer detection were used to observe the effect of mangiferin at different concentrations on the biological characteristics of rat bone marrow mesenchymal stem cells, as well as the proliferation of bone marrow mesenchymal stem cells.
RESULTS AND CONCLUSION: In a certain range of concentration, different concentrations of mangiferin could promote the proliferation and differentiation of bone marrow mesenchymal stem cells, and showed a dose and time dependent manner. The mangiferin at the concentration of 20 μmol/L and 40 μmol/L had the most significant effect (P < 0.01); followed by the concentration of 80 μmol/L induction for 48 and 72 hours (P < 0.05). The S phase ratio of the cells induced with 20, 40 and 80 μmol/L mangiferin was higher than that of the normal cells, and the S phase ratio of the bone marrow mesenchymal stem cells induced with 40 μmol/L mangiferin was the highest (P < 0.05). Mangiferin capromote the proliferation of bone marrow mesenchymal stem cells in vitro.Li XF, Zhao JM, Luo SX, Cheng JW, Liu JT. Effect of mangiferin on the proliferation of rat bone marrow mesenchymal stem cells.Zhongguo Zuzhi Gongcheng Yanjiu. 2012;16(49):9247-9252.

中图分类号:

R394.2

李晓峰，赵劲民，罗世兴，程建文，刘军廷. 芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞增殖的影响[J]. 中国组织工程研究, 2012, 16(49): 9247-9252.

Li Xiao-feng, Zhao Jin-min, Luo Shi-xing, Cheng Jian-wen, Liu Jun-ting. Effect of mangiferin on the proliferation of rat bone marrow mesenchymal stem cells[J]. Chinese Journal of Tissue Engineering Research, 2012, 16(49): 9247-9252.

图/表（结果） 8

2.1 芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞的药物毒性试验细胞毒性试验(MTT法)证实，芒果苷处理大鼠骨髓间充质干细胞 24 h，处理浓度低于100 μmol/L时，芒果苷能促进大鼠骨髓间充质干细胞的生长，以40 μmol/L组促进细胞增殖效果最好；处理浓度高于100 μmol/L时，芒果苷抑制大鼠骨髓间充质干细胞的生长，并呈浓度依赖性，见图1。

Figure 1 Drug toxicity testing of mangiferin on rat bone marrow mesecnhymal stem cells

图 1 芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞作用的药物毒性试验

2.2 芒果苷作用于大鼠骨髓间充质干细胞的生长曲线见图2。

Figure 2 Growth curve of rat bone marrow mesenchymal stem cells after induced with mangiferin (MTT method)

图2 芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞作用的生长曲线

(MTT法)

芒果苷作用于大鼠骨髓间充质干细胞的生长曲线结果证实：各组细胞在接种第一两天为细胞潜伏适应期，第3-6天生长曲线基本为线性曲线，表明这段时间是细胞的对数生长期。第7天后曲线逐渐变得平缓，细胞增殖明显减慢，进入平台期。在对数生长期第3，4，5天，芒果苷各组吸光度值均较正常细胞组高，差异有显著性意义(P < 0.05)。

2.3 芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞增殖作用的细胞周期检测不同浓度组芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞作用24 h，进行细胞周期的流式细胞仪检测，比较各组间细胞S期百分比。结果显示，各组细胞S期所占百分比为：正常细胞组(5.73±0.33)%，芒果苷20 μmol/L组(7.24±0.51)%，芒果苷40 μmol/L组(7.79±0.46)%，芒果苷80 μmol/L组(7.24±0.44)%。芒果苷20，40，80 μmol/L等各组细胞S期比值均较正常细胞明显增高(P < 0.05)。

2.4 芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞增殖作用的细胞周期检测血清饥饿法采用血清饥饿法将大鼠骨髓间充质干细胞的同步化，血清饥饿48 h后，细胞富集于G₀/G₁期，复给含15%血清和不同浓度芒果苷的培养基继续培养。芒果苷作用于大鼠骨髓间充质干细胞12 h及24 h后，进行细胞周期的流式细胞仪检测，比较各组间细胞S期百分比。结果显示，芒果苷作用于大鼠骨髓间充质干细胞12 h，各组S期比值差异无显著性意义(P > 0.05)。芒果苷作用于大鼠骨髓间充质干细胞 24 h， 20 μmol/L组细胞S期比值较正常细胞明显增高(P < 0.05)、40，80 μmol/L组细胞S期比值均较正常细胞显著增高(P < 0.01)，见表1和图3。

表1 芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞增殖作用的细胞周期检测(血清饥饿法) Table 1 The cell cycle detection of rat bone marrow mesenchymal stem cells after induced with mangiferin (serum starvation)

Figure 3 The cell cycle detection of rat bone marrow mesenchymal stem cells after induced with mangiferin (serum starvation)

图3 芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞增殖作用的细胞周期检测(血清饥饿法)

2.5 芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞的增殖示踪检测芒果苷作用于大鼠骨髓间充质干细胞 24，48，72 h后，分别进行增殖示踪的流式细胞仪检测，比较各组间细胞分裂次数百分比。结果显示，芒果苷作用24 h，各组细胞的分裂百分比较，差异无显著性意义(P > 0.05)；芒果苷作用48 h，芒果苷20，40，80 μmol/L组在分裂的第3代及第4代细胞比例与正常细胞组比较，差异有显著性意

义(P < 0.05)，并且芒果苷40 μmol/L组提前分裂至第5代，与正常细胞组比较差异有极其显著性意义(P < 0.01)；芒果苷作用72 h，芒果苷20，40，80 μmol/L组在分裂的第3，4，5代细胞比例与正常细胞组比较有非常显著性意义(P < 0.01)，见表2-4和图4。

表2 芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞的增殖示踪检测(作用24 h)

Table 2 Cell cycle detection of rat bone marrow mesenchymal stem cells after induced with mangiferin for 24 h

(x(_)±s, n=3)

表3 芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞的增殖示踪检测(作用48 h)

Table 3 Proliferation of rat bone marrow mesenchymal stem cells after induced with mangiferin for 48 h

(x(_)±s, n=3)

表4 芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞的增殖示踪检测(作用72 h)

Table 4 Proliferation of rat bone marrow mesenchymal stem cells after induced with mangiferin for 72 h

(x(_)±s, n=3)

Figure 4 Proliferation of rat bone marrow mesenchymal stem cells after induced with mangiferin

图4 芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞的增殖示踪检测

参考文献

[1] Pittenger MF, Mackay AM, Beck SC,et al. Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells. Science 1999;284 (5411):143-147.

[2] Li XF, Zhao JM, Su W, et al. Zhongguo Zuzhi Gongcheng Yanjiu yu Linchuang Kangfu. 2011;15(10): 1721-1725.李晓峰,赵劲民,苏伟,等.大鼠骨髓间充质干细胞的培养与鉴定[J].中国组织工程研究与临床康复,2011,15(10):1721-1725.

[3] Friedenstein AJ, Piatetzky S II, Petrakova KV. Osteogenesis in transplants of bone marrow cells. J Embryol Exp Morphol 1966;16(3):381-390.

[4] Campagnoli C, Roberts IA, Kumar S, et al. Identification of mesenchymal stem/progenitor cells in human first-trimester fetal blood, liver, and bone marrow. Blood. 2001;98(8): 2396-2402.

[5] O’Donoghue K, Choolani M, Chan J,et al. Identification of fetal mesenchymal stem cells in maternal blood: implications for non-invasive prenatal diagnosis. Mol Hum Reprod. 2003; 9(8):497-502.

[6] Lee OK, Kuo TK, Chen WM,et al. Isolation of multipotent mesenchymal stem cells from umbilical cord blood. Blood. 2004;103(5):1669-1675.

[7] Agarwala S, B NR, Mudholkar K, et al. Mangiferin, a dietary xanthone protects against mercuryinducedtoxicity in HepG2 cells. Environ Toxicol. 2012;27(2):117-127.

[8] Yoosook C, Bunyapraphatsara N, Boonyakiat Y,et al. Anti-herpes simplex virus activities of crude water extracts of Thai medicinal plants.Phytomedicine. 2000;6(6):411- 419.

[9] Campos-Esparza MR, Sánchez-Gómez MV, Matute C. Molecular mechanisms of neuroprotection by two natural antioxidant polyphenols.Cell Calcium. 2009;45(4):358-368.

[10] Garrido-Suárez BB, Garrido G, Delgado R, et al. A Mangifera indica L. extract could be used to treat neuropathic pain and implication of mangiferin.Molecules. 2010;15(12):9035-9045.

[11] Rajendran P, Ekambaram G, Sakthisekaran D. Cytoprotective effect of mangiferin on benzo(a)pyrene-induced lung carcinogenesis in swiss albino mice.Basic Clin Pharmacol Toxicol. 2008;103(2):137-142.

[12] Lin H, Chen R, Liu X, et al. Study on interaction of mangiferin to insulin and glucagon in ternary system.Spectrochim Acta A Mol Biomol Spectrosc. 2010;75(5):1584-1591.

[13] Prabhu S, Jainu M, Sabitha KE,et al. Cardioprotective effect of mangiferin on isoproterenol induced myocardial infarction in rats.Indian Journal Of Experimental Biology .2006;44(3): 209-215.

[14] Muruganandan S, Srinivasa K, Gupta S, et al. Effect of mangiferin on hyperglycemia and atherogenicity in streptozotocin diabetic rats.Journal Of Ethnopharmacology. 2005;97(3): 497-501.

[15] Pardo Andreu GL, Maurmann N, Reolon GK, et al. Mangiferin, a naturally occurring glucoxilxanthone improves long-term object recognition memory in rats. Eur J Pharmacol. 2010; 635(1-3):124-128.

[16] Aggarwal BB. Nuclear factor-kappaB: the enemy within. Cancer Cell 2004;6:203–208.

[17] Huang H, Zhao N, Xu X, et al. Dose-specific effects of tumor necrosis factor alpha on osteogenic differentiation of mesenchymal stem cells.Cell Prolif. 2011;44(5):420-427.

[18] Kushner JA, Ciemerych MA, Sicinska E, et al. Cyclins D2 and D1 are essential for postnatal pancreatic beta-cell growth. Mol Cell Biol. 2005;25(9):3752-3762.

[19] Campbell KJ, Rocha S, Perkins ND. Active repression of antiapoptotic gene expression by RelA(p65) NF-kappa B.Mol Cell. 2004;13(6):853-865.

[20] Fu M, Wang C, Li Z, et al. Minireview: Cyclin D1: normal and abnormal functions. Endocrinology. 2004;145(12):5439-5447.

[21] Wang DX,Jiang HX,Su SB,et al. Zhongguo Zuzhi Gongcheng Yanjiu yu Linchuang Kangfu.2010;14(10):1764-1768.王东旭,姜海行,苏思标,等.体外共培养大鼠骨髓间充质干细胞对肝星状细胞增殖的影响:Cyclin D1与P27表达调控[J].中国组织工程研究与临床康复,2010,14(10):1764-1768.

[22] Tomita N. BCL2 and MYC dual-hit lymphoma/leukemia.J Clin Exp Hematop. 2011;51(1):7-12.

[23] Korsmeyer SJ. Bcl-2 initiates a new category of oncogenes: regulators of cell death. Blood .1992;80(4):879-886.

引言

材料方法

设计：细胞生物学特性实验研究。

时间及地点：于2011年1至6月在广西医科大学基础中心实验室完成。

材料：取SPF级4周龄SD大鼠20只，雄性，体质量不限，由广西医科大学动物实验中心提供，合格证号:SCXK(桂)2009-0002。实验过程中对动物的处置符合2009年《Ethical issues in animal experimentation》相关动物伦理学标准的条例。

方法：
大鼠骨髓间充质干细胞的培养与鉴定：参见作者前期实验研究《大鼠骨髓间充质干细胞的培养与鉴定》[2]。

不同浓度芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞作用的药物毒性试验：取第2代大鼠骨髓间充质干细胞，96孔板中2-11列加细胞5×103 /孔。将 200 μL培养基加至第1列和第12列。培养48 h。第3-11列加入芒果苷，浓度分别为10，20，30，40，50，100，200，400，1 000 μmol/L。培养24 h后，每日换新鲜培养基至48 h。所有孔中各加入50 μL MTT。温育4 h。弃培养基和MTT，各孔加入200 μL DMSO。490 nm处记录吸光值。用第1列调零。以药物浓度为横坐标(X轴)，吸光度值为纵坐标(Y轴)绘图。

实验分组及骨髓间充质干细胞生长曲线绘制：将骨髓间充质干细胞接种于7块96孔培养板，接种密度5×103/孔，以不加芒果苷的正常细胞设为对照组，同时设立芒果苷20，40，60、 80 μmol/L浓度组。每日取1板进行MTT检测。490 nm处记录吸光值，绘制细胞生长曲线。

芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞增殖作用的细胞周期检测：取接种于6孔板的第3代骨髓间充质干细胞，接种密度5×105/孔，分组同上，培养24 h；消化、收集细胞；体积分数70%乙醇固定，4 ℃保存，染色前用PBS洗去固定液；按试剂盒操作，流式细胞仪检测细胞周期。

芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞增殖作用的细胞周期检测(血清饥饿法)：取接种于6孔板的第3代骨髓间充质干细胞，接种密度5×105/孔，培养24 h；PBS清洗2次；加入含血清0.5%的L-DMEM，培养48 h；弃培养基，加入含血清15%的L-DMEM，分别培养12，24 h；每组重复3例；消化、收集；体积分数70%乙醇固定，4 ℃保存，染色前用PBS洗去固定液；按试剂盒操作，流式细胞仪检测细胞周期。

芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞的增殖示踪检测：取第3代细胞以5×105/孔种植于6孔板中，培养24 h；每组重复3例；用终浓度5 μmol/L的细胞增殖示踪荧光探针CFDA SE标记细胞 15 min；分别于标记后24，48，72 h，消化，收集细胞，用PBS清洗并重悬细胞，流式细胞仪检测细胞增殖。

主要观察指标：①芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞作用的药物毒性作用。②芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞的细胞周期作用。③芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞的增殖作用。

统计学分析：所有数据均用统计软件SPSS 15.0处理，计量资料以x(_)±s表示，组间比较采用单因素方差分析，两两比较采用LCD法；若数据不符合正态分布，则采用秩和检验；P < 0.05为差异有显著性意义。实验结果均经重复3次。

讨论

骨髓间充质干细胞是存在骨髓中具有高度自我更新能力和多向分化潜能的成体干细胞。1966年，Friedenstein等^[3]首次对骨髓间充质干细胞进行了描述，他们从大鼠骨髓细胞中分离培养了骨/软骨形成祖细胞。目前，虽然已能在一些组织，包括肝脏、胚胎血，脐带血和羊水中分离培养间充质干细胞^[4-6]，但是间充质干细胞的获得和研究主要集中在骨髓组织。在骨髓中，骨髓间充质干细胞占骨髓有核细胞总数的0.001%-0.1%。李晓峰等^[2]应用全骨髓贴壁法获得了高纯度、增殖能力强的大鼠骨髓间充质干细胞。

芒果苷(Mangiferin)，别名：芒果甙、知母宁； CAS 登录号：4773-96-0。芒果甙是一种四羟基吡啶的碳糖甙,属双苯吡酮类化合物。现代药理和临床研究证明,芒果甙以及含芒果甙植物提取物具有多方面生理和药理作用，如抗氧化、抗病毒、调节凋亡、抗炎症、抗癌、抗糖尿病等作用^[7-12]。它可减轻氧化损伤，线粒体能量代谢的激活，并能保护心肌结果的完整性，改善异丙肾上腺素介导的病理变化。在体内由肥大细胞介导的炎症变态反应模型中，它可以成功得用于治疗过敏反应，可能在调整体液反应的免疫病理紊乱中有潜在的价值^[13]。同时，有显著的抗糖尿病、抗高血脂、抗动脉粥样硬化的作用^[14]。

有研究发现，芒果苷能刺激大鼠神经元细胞生长，其结果与本研究结果基本一致。其作用可能与核转录因子kb(NF-kb)途径有关，但具体调控机制仍不清楚^[15]。有研究证实：核转录因子kb与细胞增殖，血管发生、抗凋亡有关^[16]。Huang等^[17]发现阻断核转录因子kb信号通路后，骨髓间充质干细胞的生长受到抑制。核转录因子κB可调节下游基因，通过抗凋亡和调节有丝分裂等机制促进细胞生长。如其下游基因CyclinD1和c-Myc可刺激细胞的生长和增殖^[18]，c-IAP1、c-IAP2、c-FLIP、Traf1、Traf2、A20、Bfl1/A1、Bcl-xL、XIAP和IEX-1L的表达则对抗凋亡^[19]。CyclinD1是细胞周期从G₁期转换到S期的一个关键调控蛋白，它参与细胞周期的精确调控，维持细胞正常生长发育平衡^[20]。王东旭等^[21]发现大鼠骨髓间充质干细胞能够抑制肝星状细胞的增殖，其机制可能是通过下调CyclinD1表达、上调P27蛋白表达，使细胞周期停滞于G₀/G₁期实现的。c-myc基因是一个细胞生长和细胞周期演进的正调控基因，可使细胞无限增殖，促进细胞分裂，也是调节细胞分化的关键基因。c-myc在细胞周期各阶段持续稳定表达，几乎在所有正常组织中均有表达，并在快速增殖的组织中高表达^[22]。Bcl-2家族主要定位在核膜的胞质面、内质网及线粒体外膜上，能通过抑制细胞凋亡，促进细胞存活等来促进细胞的生长^[23]。

目前，尚未见芒果苷促进骨髓间充质干细胞增殖的报道。在本研究中，通过细胞毒性分析，细胞周期分析，饥饿法细胞同步周期分析及荧光增殖示踪等方法检测芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞的毒性作用及增殖作用，发现芒果苷(20-80 μmol/L)能促进大鼠骨髓间充质干细胞生长，具有浓度依赖性，以40 μmol/L芒果苷促进效果最好。芒果苷通过哪种机制或通路刺激大鼠骨髓间充质干细胞生长，有待进一步研究证实。课题组将对相关调控基因进行更深入的研究，以期为组织工程种子细胞的增殖寻找新的途径。

芒果苷对大鼠骨髓间充质干细胞增殖的影响

Effect of mangiferin on the proliferation of rat bone marrow mesenchymal stem cells

PDF

可视化

被引次数

摘要/Abstract

引用本文

使用本文

图/表（结果） 8

参考文献

相关文章 15

引言

材料方法

讨论

文章快阅

延伸阅读

编辑推荐

Metrics

本文评价

[1]	张同同, 王中华, 文杰, 宋玉鑫, 刘林. 3D打印模型在颈椎肿瘤手术切除与重建中的应用[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(9): 1335-1339.
[2]	侯婧瑛, 于萌蕾, 郭天柱, 龙会宝, 吴浩. 缺氧预处理激活HIF-1α/MALAT1/VEGFA通路促进骨髓间充质干细胞生存和血管再生[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(7): 985-990.
[3]	梁学奇, 郭黎姣, 陈贺捷, 武杰, 孙雅琪, 邢稚坤, 邹海亮, 陈雪玲, 吴向未. 泡状棘球绦虫原头蚴抑制骨髓间充质干细胞向成纤维细胞的分化[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(7): 996-1001.
[4]	耿瑶, 尹志良, 李兴平, 肖东琴, 侯伟光. hsa-miRNA-223-3p调控人骨髓间充质干细胞成骨分化的作用[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(7): 1008-1013.
[5]	伦志刚, 金晶, 王添艳, 李爱民. 过氧化物还原酶6干预骨髓间充质干细胞增殖及体外向神经谱系诱导分化[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(7): 1014-1018.
[6]	朱雪芬, 黄成, 丁健, 戴永平, 刘元兵, 乐礼祥, 王亮亮, 杨建东. 胶质细胞神经营养因子诱导骨髓间充质干细胞向功能性神经元分化的机制[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(7): 1019-1025.
[7]	裴丽丽, 孙贵才, 王弟. 丹酚酸B抑制骨髓间充质干细胞氧化损伤及促进分化为心肌样细胞[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(7): 1032-1036.
[8]	李偲, 赵婷, 谭戈, 郑雨林, 张若男, 吴艳, 唐俊明. 血小板源生长因子BB可促进骨骼肌成肌细胞增殖、分化与迁移[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(7): 1050-1055.
[9]	刘聪, 刘肃. miR-17-5p调控低氧诱导因子1α介导脂肪细胞分化及血管生成的分子机制[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(7): 1069-1074.
[10]	王诗琦, 张金生. 中医药调控缺血缺氧微环境对骨髓间充质干细胞增殖、分化及衰老的影响[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(7): 1129-1134.
[11]	曾燕华, 郝延磊. 许旺细胞体外培养及纯化的系统性综述[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(7): 1135-1141.
[12]	马泽涛, 曾晖, 王德利, 翁鉴, 冯松. 微小RNA-138-5p与软骨细胞增殖和自噬的关系[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(5): 674-678.
[13]	蒋欣, 乔良伟, 孙东, 李明, 房军, 曲青山. 肾移植患者血清中长链非编码RNA PGM5-AS1表达及调控人肾小球内皮细胞的作用[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(5): 741-745.
[14]	徐东紫, 张婷, 欧阳昭连. 心脏组织工程领域全球专利竞争态势分析[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(5): 807-812.
[15]	王玉姣, 刘丹, 孙嵩, 孙勇. 改良型富血小板纤维蛋白复合双相磷酸钙可促进兔骨髓间充质干细胞的活性[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(4): 504-509.